O grupo coliforme é composto por bactérias não só do intestino de mamíferos, como é o caso da Escherichia coli, mas também de outras de origem ambiental, sendo Citrobacter, Klebsiella e Enterobacter. Os coliformes são utilizados como indicadores da qualidade de água.
Como já vimos aqui no bioneogenios, a técnica mais utilizada para análise bacteriológica da água é de tubos múltiplos. Entretanto, por falta de tempo, espaço ou algum outro fator, alguns laboratórios preferem adotar sistemas mais rápidos e práticos, chamados métodos alternativos, conforme veremos a seguir.
Presença
e Ausência (P.A)
É bem semelhante à técnica dos tubos múltiplos,
sendo muito usada por órgãos de fiscalização, como a Vigilância Sanitária. É um
método qualitativo – apenas diz se há ou não a presença de coliformes na água.
Vantagens:
baixo custo; precisa de pouco meio de cultura (em relação à técnica de tubos múltiplos);
simples; suja pouca vidraria; é rápido e apresenta o resultado em 24h.
Desvantagens:
não consegue distinguir os termotolerantes; utiliza toda a amostra, eliminando
a possibilidade de repetir a análise; não quantitativo; alta probabilidade de
falsos negativos.
Técnica:
Aqui utilizamos o caldo lactosado em concentração tripla, uma vez que vai
adicionar ao meio os 100 ml da amostra. O diferencial é que não é feito em tubo
de ensaio com tubos de Durham mas em um erlenmeyer contendo um tubo de ensaio invertido,
para captar o gás produzido. Adiciona-se um indicador chamado púrpura de
bromocresol, que identifica o pH produzido pelos ácidos resultantes do
metabolismo das bactérias. Quando acidifica o ambiente o indicador muda para
amarelo. Aí está a importância do tubo invertido: algumas bactérias (sem ser do
grupo coliforme) produzem ácidos em suas fermentações, o que causaria um falso
positivo – como se sabe, uma das características de identificação do grupo
coliforme é a produção de gases resultante da fermentação de glicose e lactose,
sendo estes gases aprisionados no tubo invertido.
Logo, se o meio estiver
amarelo, sem que haja presença de gás o resultado é negativo.
A positividade já reprova a água. Entretanto, alguns
laboratórios levam uma alçada do resultado positivo para o caldo verde
brilhante bile de boi 2% para verificar a presença ou não de bactérias
coliformes termotolerantes.
Só pra vocês verem como fica :) |
Membrana
filtrante
Vantagens:
método específico; gasta pouco meio de cultura (1 placa); resultado rápido
(24h); quali-quantitativo.
Desvantagens:
é uma técnica cara; necessita de aparelhos que não são da rotina, como a bomba
a vácuo; não serve para águas turvas, pois a membrana iria “entupir” devido as
partículas presentes no solvente; gasta toda a amostra; não diferencia o total
de termotolerantes; não detecta a produção de gás.
Técnica:
realiza a filtração a vácuo com uma membrana de porosidade 0,45 µm, sem
permitir a passagem de bactérias. Em seguida a membrana é transferida para
meios diferencial, seletivo e nutritivo (M-ágar LES ou ágar M-endo).
Meio M-endo: coliformes totais ficam rosa a
vermelho, com brilho metálico. Incubação a 35°C por 24h.
Para colônias típicas e atípicas (não coliforme)
é permitida a formação de até 200 UFC/100 ml.
Se for uma água com suspeita de ser pobre é
permitido o uso de meios de enriquecimento menos seletivos, como o lauril
triptose.
Substrato
definido (Cromogênico e fluorogênico)
A obtenção do resultado depende da presença de
enzimas produzidas pelas bactérias.
CROMOGÊNICO: cor.
FLUOROGÊNICO: fluorescência.
·
β-galactosidase: lactose → Glicose +
galactose.
ONPG
(substrato) → nitrofenol.
·
βD-glucuronidase: MUG →
4-metilumbelifenona
A 4-metilumbelifenona é produzida pela Escherichia coli que, quando exposto à
UV (366 nm) apresenta fluorescência esverdeada e brilhante. Algumas cepas de Klebsiella também fazem isso.
Técnica:
Colocar os 100 ml da amostra em um erlenmeyer estéril e adicionar um sachê do
substrato. A positividade é indicada pela coloração amarela ou fluorescência
esverdeada. Incubar por 24h em estufa a 35°C.
Vantagens:
consegue detectar termotolerantes e totais, ou seja, é específico; fácil;
rápido.
Desvantagens:
custo elevado; não quantitativo; gasta os 100 ml de amostra.
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